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Percoll细胞分离液,LK-1260
产品简介
Percoll PLUS由硅烷共价包覆的胶体二氧化硅组成。Percoll也由胶体二氧化硅组成,但涂有聚乙烯吡咯烷酮(PVP)。由于介质中颗粒大小的不均匀性,Percoll PLUS/Percoll离心导致自发形成密度梯度。Percoll PLUS/Percoll可通过梯度混合器或高速离心形成梯度。在后一种情况下,样品可与介质预混合,然后在原位产生的梯度上分离。这样,可以在一次操作中实现梯度形成和样品分离。Percoll PLUS/Percoll是细胞、病毒和亚细胞颗粒密度梯度离心的参考介质。
规格:100mL/1L
保存:未开封时可于室温保存,有效期4年。开封后保存于2-8℃。
物理性质
1. 渗透压低,可精确调节生理条件,而不受培养基的显著干扰。
2. 与活细胞和病毒的兼容性,可分离和恢复完整、完全活跃的系统。
3. 不渗透生物膜,离心过程中颗粒的浮力密度没有变化。
4. 离心过程中自发形成梯度,允许在离心管中混合大量样品。
5. 粘度导致梯度快速形成和颗粒分离。
属性 | Percoll PLUS | Percoll |
组成 | 含共价连接硅烷的二氧化硅溶胶 | 具有不可透析PVP涂层的二氧化硅溶胶 |
密度(g/ml) | 1.130 ± 0.005 | 1.130 ± 0.005 |
渗透压(mOsm/kg H2O) | max. 30 | max. 25 |
电导率(mS/m) | - | max. 100 |
黏度(cP) | max. 15 | max. 15 |
pH | 9.4 ± 0.5 | 9.0 ± 0.5 |
内毒素(EU/ml) | < 2 | - |
产品使用方法(仅供参考)
l 梯度的制备
1. Percoll PLUS/Percoll最好用平衡盐溶液、生理盐水或0.25 M蔗糖进行配制。细胞可以在平衡盐溶液中按梯度分离。然而,亚细胞颗粒往往在盐存在的情况下聚集,建议用0.25M的蔗糖稀释的Percoll PLUS/Percoll中进行分离。
2. 将9份(v/v)Percoll PLUS/Percoll添加到1份(v/v)1.5 M NaCl、10×浓缩细胞培养基或2.5M蔗糖中,得到渗透压约340 mOsm/kg H2O的溶液。通过调节Percoll PLUS/Percoll和盐或蔗糖溶液的相对体积,可以制备不同渗透压的溶液。
3. 可通过添加盐或蒸馏水对所需渗透压进行调整。当需要精确的渗透压时,建议使用渗透压计测量溶液的渗透压。也可以使用10×生理盐水以外浓度的溶液进行配制。l
l Percoll PLUS/Percoll离心
Percoll PLUS/Percoll在0.15 M盐溶液最低使用大约10000×g,或在0.25M蔗糖中最低使用大约25000×g,以便在角度转头中自动生成梯度。细胞或亚细胞颗粒可在离心前与Percoll PLUS/Percoll混合,并在原位形成等梯度区带。虽然Percoll PLUS/Percoll最好用角转子进行离心,但在水平转子中,在400g下进行20至30分钟的离心,细胞可在连续或不连续密度梯度上形成等梯度区带。l
l Percoll PLUS/Percoll 梯度的密度测定
1. 梯度分馏后的Percoll PLUS/Percoll溶液的密度可使用折射计进行测定。折射率与Percoll PLUS/Percoll溶液的密度呈线性关系。
2. Percoll在蔗糖和NaCl溶液中(20°C)经系列稀释的密度和折射率信息见表和图2
Percoll in sucrose | Percoll in NaCl | ||
Density (g/ml) | Refractive index | Density (g/ml) | Refractive index |
1.0345 | 1.3457 | 1.0085 | 1.3350 |
1.0484 | 1.3478 | 1.0243 | 1.3372 |
1.0618 | 1.3499 | 1.0403 | 1.3399 |
1.0765 | 1.3518 | 1.0558 | 1.3423 |
1.0903 | 1.3541 | 1.0713 | 1.3449 |
1.1040 | 1.3561 | 1.0869 | 1.3470 |
1.1180 | 1.3582 | 1.1029 | 1.3493 |
1.1319 | 1.3600 | 1.1189 | 1.3519 |
1.1461 | 1.3626 | 1.1305 | 1.3534 |
1.1547 | 1.3638 | 1.1513 | 1.3569 |

图2. 20℃下,Percoll在NaCl和蔗糖溶液中的折射率与密度之间的相关性。线性关系由最小二乘线性回归方法获得。Percoll在NaCl和蔗糖溶液中的线性拟合优度(R2)均为0.9995。
图 2 是通过测量Percoll在NaCl和蔗糖溶液中的密度和折射率获得的。溶液制备方法如下:在量筒中,加入最终所需体积1/10的1.5 M NaCl或2.5 M蔗糖。所需未稀释Percoll的体积可根据公式[1]进行计算:

V0=未稀释Percoll的体积[ml]
V=最终溶液的体积[ml]
ρ=最终溶液所需的密度[g/ml]
ρ0=Percoll的密度(未稀释)[g/ml]
ρ10=1.5 M NaCl或2.5蔗糖的密度[g/ml]
ρ10=1.5 M NaCl的密度= 1.058 g/ml(对于其他盐类有较小的差别)
2.5 M蔗糖的密度= 1.316 g/ml(对其他添加物有较小的差别
注意:公式[1]未考虑Percoll PLUS/Percoll中固体二氧化硅所占的体积。因此,溶液中NaCl和蔗糖的最终浓度将分别略高于0.15 M和0.25 M。使用密度计(Mettler-Toledo,DE-40)测量密度,使用阿贝折射计(Carl Zeiss)测量折射率。
l 离心后去除 Percoll PLUS/Percoll
1. 通过用生理盐水稀释并离心收集细胞,可以得到不含Percoll PLUS/Percoll颗粒的细胞。
2. 亚细胞颗粒可通过上述步骤从Percoll PLUS/Percoll中分离出来。颗粒大小决定从PercollPLUS/Percoll分离颗粒所需的离心力。
3. 凝胶过滤或离子交换色谱法也可用于从Percoll PLUS/Percoll中分离生物材料。
l 实用注意
1. 设备的护理和清洗:聚碳酸酯管可以和Percoll一起使用,因为颗粒不会粘附在这些管的壁上。Percoll溶液通常在离心后会在管的底部产生一些颗粒状的紧密的硅小球,并沉淀在用于分离等操作的管路的壁上。这些沉淀变干后很难清除。因此建议所有的设备在使用后马上清洗。溢出的Percoll可以用水清洗去除。
2. 硅颗粒聚集:不管是在高压灭菌期间还是在长期的保存期间,所有硅溶胶的固有倾向是形成聚集物。这些聚集物可以在一些批次的Percoll中可以被观察到,它们或者是做为一种轻微的沉淀物,或者是密度为1.04到1.05g/ml的模糊的白色区带。这个区带可能在离心中或预制梯度的低速离心期间形成梯度时形成。聚集的硅颗粒并没有干扰生物颗粒的分离,因为几乎所有的细胞和细胞器在Percoll中的浮力密度都大于1.05 g/ml。
3. 对于某些特定试验,可能需要去除这些聚集物;这可以通过在离心之前通过深层过滤器过滤Percoll来实现。由于硅烷涂层,Percoll PLUS中不会出现聚集问题。