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  • LK-1260 Percoll细胞分离液
  • LK-1260 Percoll细胞分离液

    • 1255.00
      1255.00
产品描述

Percoll细胞分离液,LK-1260

产品简介

Percoll PLUS由硅烷共价包覆的胶体二氧化硅组成。Percoll也由胶体二氧化硅组成,但涂有聚乙烯吡咯烷酮(PVP)。由于介质中颗粒大小的不均匀性,Percoll PLUS/Percoll离心导致自发形成密度梯度。Percoll PLUS/Percoll可通过梯度混合器或高速离心形成梯度。在后一种情况下,样品可与介质预混合,然后在原位产生的梯度上分离。这样,可以在一次操作中实现梯度形成和样品分离。Percoll PLUS/Percoll是细胞、病毒和亚细胞颗粒密度梯度离心的参考介质。

规格:100mL/1L

保存:未开封时可于室温保存,有效期4年。开封后保存于2-8℃。

物理性质

1. 渗透压低,可精确调节生理条件,而不受培养基的显著干扰。

2. 与活细胞和病毒的兼容性,可分离和恢复完整、完全活跃的系统。

3. 不渗透生物膜,离心过程中颗粒的浮力密度没有变化。

4. 离心过程中自发形成梯度,允许在离心管中混合大量样品。

5. 粘度导致梯度快速形成和颗粒分离。

属性

Percoll PLUS

Percoll

组成

含共价连接硅烷的二氧化硅溶胶

具有不可透析PVP涂层的二氧化硅溶胶

密度(g/ml)

1.130 ± 0.005

1.130 ± 0.005

渗透压(mOsm/kg H2O)

max. 30

max. 25

电导率(mS/m)

-

max. 100

黏度(cP)

max. 15

max. 15

pH

9.4 ± 0.5

9.0 ± 0.5

内毒素(EU/ml)

< 2

-

产品使用方法(仅供参考)

梯度的制备

1. Percoll PLUS/Percoll最好用平衡盐溶液、生理盐水或0.25 M蔗糖进行配制。细胞可以在平衡盐溶液中按梯度分离。然而,亚细胞颗粒往往在盐存在的情况下聚集,建议用0.25M的蔗糖稀释的Percoll PLUS/Percoll中进行分离。

2. 9份(v/vPercoll PLUS/Percoll添加到1份(v/v1.5 M NaCl10×浓缩细胞培养基或2.5M蔗糖中,得到渗透压约340 mOsm/kg H2O的溶液。通过调节Percoll PLUS/Percoll和盐或蔗糖溶液的相对体积,可以制备不同渗透压的溶液。

3. 可通过添加盐或蒸馏水对所需渗透压进行调整。当需要精确的渗透压时,建议使用渗透压计测量溶液的渗透压。也可以使用10×生理盐水以外浓度的溶液进行配制。l

Percoll PLUS/Percoll离心

Percoll PLUS/Percoll0.15 M盐溶液最低使用大约10000×g,或在0.25M蔗糖中最低使用大约25000×g,以便在角度转头中自动生成梯度。细胞或亚细胞颗粒可在离心前与Percoll PLUS/Percoll混合,并在原位形成等梯度区带。虽然Percoll PLUS/Percoll最好用角转子进行离心,但在水平转子中,在400g下进行2030分钟的离心,细胞可在连续或不连续密度梯度上形成等梯度区带。l

Percoll PLUS/Percoll 梯度的密度测定

1. 梯度分馏后的Percoll PLUS/Percoll溶液的密度可使用折射计进行测定。折射率与Percoll PLUS/Percoll溶液的密度呈线性关系。

2. Percoll在蔗糖和NaCl溶液中(20°C)经系列稀释的密度和折射率信息见表和图2

Percoll in sucrose

Percoll in NaCl

Density (g/ml)

Refractive index

Density (g/ml)

Refractive index

1.0345

1.3457

1.0085

1.3350

1.0484

1.3478

1.0243

1.3372

1.0618

1.3499

1.0403

1.3399

1.0765

1.3518

1.0558

1.3423

1.0903

1.3541

1.0713

1.3449

1.1040

1.3561

1.0869

1.3470

1.1180

1.3582

1.1029

1.3493

1.1319

1.3600

1.1189

1.3519

1.1461

1.3626

1.1305

1.3534

1.1547

1.3638

1.1513

1.3569


 

2. 20℃下,PercollNaCl和蔗糖溶液中的折射率与密度之间的相关性。线性关系由最小二乘线性回归方法获得。PercollNaCl和蔗糖溶液中的线性拟合优度(R2)均为0.9995


2 是通过测量PercollNaCl和蔗糖溶液中的密度和折射率获得的。溶液制备方法如下:在量筒中,加入最终所需体积1/101.5 M NaCl2.5 M蔗糖。所需未稀释Percoll的体积可根据公式[1]进行计算:


V0=未稀释Percoll的体积[ml]

V=最终溶液的体积[ml]

ρ=最终溶液所需的密度[g/ml]

ρ0=Percoll的密度(未稀释)[g/ml]

ρ10=1.5 M NaCl2.5蔗糖的密度[g/ml]

ρ10=1.5 M NaCl的密度= 1.058 g/ml(对于其他盐类有较小的差别)

2.5 M蔗糖的密度= 1.316 g/ml(对其他添加物有较小的差别

注意:公式[1]未考虑Percoll PLUS/Percoll中固体二氧化硅所占的体积。因此,溶液中NaCl和蔗糖的最终浓度将分别略高于0.15 M0.25 M。使用密度计(Mettler-ToledoDE-40)测量密度,使用阿贝折射计(Carl Zeiss)测量折射率。

离心后去除 Percoll PLUS/Percoll

1. 通过用生理盐水稀释并离心收集细胞,可以得到不含Percoll PLUS/Percoll颗粒的细胞。

2. 亚细胞颗粒可通过上述步骤从Percoll PLUS/Percoll中分离出来。颗粒大小决定从PercollPLUS/Percoll分离颗粒所需的离心力。

3. 凝胶过滤或离子交换色谱法也可用于从Percoll PLUS/Percoll中分离生物材料。

实用注意

1. 设备的护理和清洗:聚碳酸酯管可以和Percoll一起使用,因为颗粒不会粘附在这些管的壁上。Percoll溶液通常在离心后会在管的底部产生一些颗粒状的紧密的硅小球,并沉淀在用于分离等操作的管路的壁上。这些沉淀变干后很难清除。因此建议所有的设备在使用后马上清洗。溢出的Percoll可以用水清洗去除。

2. 硅颗粒聚集:不管是在高压灭菌期间还是在长期的保存期间,所有硅溶胶的固有倾向是形成聚集物。这些聚集物可以在一些批次的Percoll中可以被观察到,它们或者是做为一种轻微的沉淀物,或者是密度为1.041.05g/ml的模糊的白色区带。这个区带可能在离心中或预制梯度的低速离心期间形成梯度时形成。聚集的硅颗粒并没有干扰生物颗粒的分离,因为几乎所有的细胞和细胞器在Percoll中的浮力密度都大于1.05 g/ml

3. 对于某些特定试验,可能需要去除这些聚集物;这可以通过在离心之前通过深层过滤器过滤Percoll来实现。由于硅烷涂层,Percoll PLUS中不会出现聚集问题。