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心脏细胞分离与培养试剂盒,LK-1272
产品概述
本试剂盒提供心脏细胞(如心肌细胞、成纤维细胞)分离与培养所需的完整溶液体系,适用于小鼠心脏灌注消化法。所有组分经严格质量控制,确保细胞活性和实验重复性。
产品组分与保存条件
组分名称 | 规格 | 保存条件 | 使用前处理 |
培养板包被液 | 1 mL/孔(6孔板) | -20℃ | 稀释10倍,37℃包被≥2小时 |
灌注液(基础) | 20 mL | 4℃(现配现用) | 加入B液0.2 mL + C液0.8 mL |
灌注终止液(基础) | 50 mL | 4℃(现配现用) | 加入B液0.5 mL + C液2 mL |
消化液(基础) | 25 mL | -20℃ | 加入B液0.25 mL + C液1 mL |
消化终止液(基础) | 20 mL | 4℃(现配现用) | 加入B液0.2 mL + C液0.8 mL |
A液(细胞沉降剂) | 200 μL × 1管 | 4℃(避光) | 直接使用 |
100× BDM(B液) | 1 mL | -20℃ | 解冻后混匀 |
25× 牛磺酸(C液) | 5 mL | -20℃ | 解冻后混匀 |
专用培养基(CM) | 40 mL | 4℃ | 预热至37℃ |
实验前准备
解冻:将-20℃保存的 包被液、消化液、B液、C液 提前置于37℃水浴解冻。
包被培养板:
- 取包被液 按1:10稀释(如100 μL原液 + 900 μL PBS),加入6孔板(1 mL/孔)。
- 37℃孵育≥2小时(或4℃过夜),使用前吸弃包被液,勿干燥(吸出包被液后,PBS润湿)。
配制工作液(现配现用):
- 灌注液(17 mL):20 mL基础液中加入 0.2 mL B液 + 0.8 mL C液。
- 灌注终止液(50 mL):50 mL基础液中加入 0.5 mL B液 + 2 mL C液。
- 消化液(25 mL):25 mL基础液中加入 0.25 mL B液 + 1 mL C液。
- 消化终止液(20 mL):19 mL灌注终止液 + 1 mL FBS(终浓度5%)(FBS自备)。
操作步骤
心脏灌注与消化
1. 预灌注:
- 麻醉小鼠,开胸暴露心脏,剪断下腔静脉和降主动脉。
- 从右心室底部进针,快速灌注 7 mL灌注液(清除血液)。
- 夹闭主动脉,剪下心脏,置于 10 mL灌注液 中,从左心尖进针缓慢灌注 10 mL灌注液。
2. 终止灌注:
- 左心尖同一进针点快速灌注 3 mL灌注终止液。
3. 消化心脏:
- 将心脏转移至 消化液 中,左心尖进针快速灌注 20 mL消化液(可重复灌注至组织变软变白)。
- 将心脏置于 3 mL新消化液中,将心脏轻轻撕碎至1mm3大小,无菌滴灌吹打至无明显组织块。
细胞分离与纯化
1. 终止消化:
- 加入 5 mL消化终止液,吹打2分钟;重复一次(总计加入10 mL终止液)。
2. 过滤与沉降:
- 用100 μm滤网过滤消化液(终体积约13 mL),收集至离心管。
- 分3次加入 A液(每次44.2 μL),每次加入后轻柔颠倒混匀,37℃静置10分钟(促进心肌细胞沉降)。
收集细胞:
- 吸弃上清(含成纤维细胞),用 专用培养基(CM) 重悬沉淀。
- 将细胞悬液接种至包被好的培养板,37℃培养1小时后换液(去除未贴壁细胞),此时可以对细胞进行干预。
注意事项
关键步骤:
- 灌注速度影响细胞存活率:快速灌注(清除血液)→ 慢速灌注(保护细胞)→ 快速终止。
- 消化时间需优化:过度消化导致细胞死亡,不足消化降低得率。
储存与稳定性:
- 避免反复冻融 B液、C液、消化液,分装后使用。
- A液需避光保存,现用现取。
细胞培养:
- 心肌细胞贴壁较弱,换液时轻柔操作。
- 成纤维细胞可通过上清离心后单独培养(如需)。
常见问题解答
1.细胞得率低?
检查消化液活性(新解冻批次)、心脏灌注是否彻底。
2.心肌细胞纯度不足?
增加A液沉降次数(最多4次),或缩短换液时间(30分钟)。
3.试剂出现沉淀?
37℃水浴加热5分钟并混匀(除A液外)。
有效期:6个月(详见包装标签)