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细胞包被工作液,LK-1610
产品介绍
细胞包被工作液是使用Matrigel配制好的即用型工作液,可以神经元、上皮,角质形成等细胞提供理想的底物支持。本细胞包被工作液是一种即用型、无菌的溶液,主要成分为从天然组织中提取的胶原蛋白,并含有其他有助于细胞贴附的因子。它能在培养器皿(如培养瓶、培养皿、多孔板等)表面模拟细胞外基质环境,形成一层薄膜,从而有效促进贴壁细胞(尤其是原代细胞、敏感细胞系和干细胞)的粘附、铺展、生长和增殖,并有助于维持细胞的功能和分化潜能。
产品特点
1. 即用型配方:无需自行配制和稀释,开瓶即用,省时省力,保证了结果的一致性。
2. 广泛适用性:适用于多种难贴壁细胞,如原代内皮细胞、神经元细胞、肝细胞、间充质干细胞等。
3. 促进细胞活力:通过提供生物相容性良好的基质,显著提高细胞贴壁率和存活率,促进细胞保持良好形态和功能。
4. 无菌保证:溶液经过0.22μm滤膜过滤除菌,可直接用于细胞培养,避免微生物污染风险。
5. 操作简便:包被过程简单快捷,孵育后即可使用,或可干燥后长期保存。
使用方法(仅供参考)
实验前准备:
将包被工作液从冰箱取出,恢复至室温(15-25°C)后再开盖,以防冷凝水污染。
准备好需要包被的细胞培养器皿(如培养瓶、皿、孔板等)。
标准包被步骤:
1. 稀释(可选):
对于大多数细胞类型,本工作液可直接使用。对于特别敏感的细胞或需要降低包被强度时,可用无菌PBS或无菌纯水按建议比例(如1:10至1:100)进行稀释。具体稀释比例请参考相关细胞培养的文献或预实验条件。
2. 包被:
向培养器皿中加入足量的包被工作液,确保液层能完全覆盖培养表面。
参考用量:
96孔板:每孔 50 - 100 μL
24孔板:每孔 200 - 500 μL
6孔板:每孔 1 - 2 mL
培养瓶(T25):2 - 3 mL
轻轻摇晃器皿,确保溶液均匀覆盖整个底面。
3. 孵育:
将包被好的器皿置于培养箱(37°C)或室温(20-25°C)下孵育。
孵育时间:至少1小时,为达到最佳效果,建议孵育过夜(12-16小时)。孵育时间越长,包被效果通常越稳定。
4. 准备使用:
方法一(常用):孵育结束后,在超净工作台内用无菌吸头彻底吸弃包被液。
方法二(干燥法,适用于长期保存):在超净台内吸弃大部分液体,打开皿盖,让残留液体在无菌条件下自然风干(通常需要数小时)。
注意:吸弃后或干燥后的器皿表面会留下一层不可见的蛋白薄膜。请不要用PBS或培养基冲洗,以免洗掉包被层。
5. 接种细胞:
将准备好的包被器皿直接用于细胞接种。加入细胞悬液后,可轻柔晃动器皿使细胞分布均匀。
随后即可按标准流程将器皿放入37°C, 5% CO₂培养箱中开始培养。
注意事项
1.无菌操作:整个包被过程应在超净工作台内进行,避免微生物污染。
2.避免污染:取用包被工作液时,请使用无菌吸头,避免直接倾倒,以防溶液被污染。
3.温度敏感性:虽然建议恢复至室温使用,但请勿将本品长时间置于高温环境(如37°C水浴)中,以免蛋白变性失活。
4.预先分装:为保证产品稳定性,不建议将整瓶试剂反复拿入/拿出超净台。可根据每次用量预先进行无菌分装。
5.个人防护:本品虽经无菌处理,但仍需作为生物制品对待,操作时请佩戴实验服和手套。
常见问题解答
Q1: 包被后的器皿需要冲洗吗?
A1: 通常情况下不需要冲洗。吸弃包被液后,器皿表面附着的微量蛋白正是起作用的包被层。冲洗会显著降低甚至完全去除这层膜,影响包被效果。仅在特定实验要求下,才考虑用无菌PBS快速润洗一次。
Q2: 包被好的器皿可以储存多久?
A2: 吸弃包被液后,可立即使用或密封后于2-8°C保存,建议在1周内使用。若采用干燥法处理,器皿可密封后于室温或2-8°C长期保存(如1个月),但使用前建议用紫外线照射30分钟以确保无菌。
Q3: 如何确定最适合我细胞的包被浓度?
A3: 建议进行浓度梯度测试。将包被工作液用PBS稀释成不同浓度(如1:10, 1:50, 1:100),分别包被孔板,然后接种细胞。通过比较细胞的贴壁率、铺展形态和生长速度,来确定最佳包被浓度。
Q4: 我的细胞贴壁效果依然不理想,可能是什么原因?
A4: 可能原因包括:① 包被时间不足;② 包被浓度过低,可尝试提高浓度或使用原液;③ 细胞本身状态不佳或传代次数过多;④ 细胞消化过度,损伤了细胞膜表面的整合素;⑤ 接种细胞时密度过低。
Q5: 本品可以用于包被玻璃底培养皿或盖玻片吗?
A5: 可以。本品适用于各种常用于细胞培养的材质表面,包括聚苯乙烯塑料、玻璃等。包被方法同上
产品声明
本产品仅限于科研,如需储存珍贵样本,请自行小规模尝试后大批量实验,产品售后仅限产品本身,无其他任何连带责任,请须知。
本产品仅供研究使用,不适用于临床诊断或治疗。